Einbettung

Die zugeschnittenen Gewebeproben und Biopsate werden in Einbettungskassetten verschlossen. Schlitze oder Löcher im Boden und im Deckel der Kassette erlauben den freien Zugang der Lösungsmittel zur Gewebsprobe. Kleine Biopsate können zusätzlich zwischen Papier in der Kassette gehalten werden.
Längliche Stanzzylinder (z.B. Leber, Mamma und Prostata) werden zwischen zwei Schaumstoffkissen in einer gestreckten Form weiterbehandelt, um später die Zylinder plan einbetten und optimal anschneiden zu können. Das Bild zeigt drei Prostatastanzen in ihren Kapseln.
Für die Paraffinhistologie muss das Gewebe entwässert und entfettet werden, erst dann lässt sich das Gewebe mit Paraffin durchtränken und wird für die Histologie schneidbar.

Der Einbettungsprozess erfolgt i.d.R. über Nacht. Die eingekapselten Gewebeproben werden dabei durch mehrere Bäder mit Alkohol geführt und dabei entwässert. Durch Proteinausfällung im Alkohol wird das Gewebe gleichzeitig gehärtet. Je nach verwendetem Alkohol wird das Material zusätzlich entfettet. Wenn Ethanol verwendet wird, muss das Gewebe anschließend mit Xylol entfettet werden. Dieses Lösungsmittel vermittelt schließlich die Immersion des Paraffins in das Gewebe. Alternativ kann auf Ethylalkohol und das Xylol verzichtet werden, wenn eine kombinierte Entwässerung und Entfettung mit Isopropanol durchgeführt wird. Aus dem Isopropanol kann man direkt in das Paraffin gehen. Alternative Einbettverfahren nutzen Azeton als Einbettungsmedium oder beschleunigen den Einbettvorgang durch eine Mikrowellen-assistierte Entwässerung.
Anschließend werden die Gewebe eingeblockt. Die 60°C warmen Gewebsproben werden in kleine wannenförmige Gießformen gesetzt und die Form mit Paraffin aufgefüllt. Die Einbettkassette wird als Träger aufgesetzt. Wenn das Paraffin erkaltet ist, kann man den Block aus der Form nehmen. Das Gewebe hat jetzt eine weitgehend gleichmäßige Härte und kann geschnitten werden.